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Diagnostic de laboratoire : le rouget

Quelles méthodes de laboratoire puis-je utiliser pour diagnostiquer le rouget ? Laquelle dois-je choisir en fonction de la situation ? Comment interpréter les résultats ?

Tests disponibles

Pathologie macroscopique

  • Inspection visuelle des lésions.
  • Avantages :
    • Presque pathognomonique : lésions cutanées aiguës (légèrement surélevées), multifocales, en forme de losange (diamant), roses à violettes.
  • Inconvénients :
    • En dehors des lésions cutanées, toutes les autres lésions sont courantes dans de nombreuses autres maladies.
    • Cela nécessite généralement une autre confirmation diagnostique.

Culture bactérienne

  • Isolement des organismes vivants à partir des tissus lésés.
  • Types d'échantillons : sang, rate, poumon, foie, rein, ganglions lymphatiques, liquide articulaire.
  • Avantages :
    • Les bactéries se développent facilement en 1 à 2 jours dans les cas aigus.
    • Facile à faire dans n'importe quel laboratoire (même interne).
    • Coût relativement bas.
  • Inconvénients :
    • Un enrichissement sélectif peut être nécessaire dans les cas chroniques.
    • Si les porcs ont déjà été traités avec des antibiotiques, cela peut empêcher la croissance bactérienne.

Sensibilité aux antimicrobiens (antibiogramme)

  • Test in vitro : capacité d'un organisme vivant à se développer sous des concentrations spécifiques de différents antimicrobiens.
  • Types d'échantillons : sang, rate, poumon, foie, rein, ganglions lymphatiques, liquide articulaire.
  • Avantages :
    • Identification de la sensibilité ou de la résistance de souches spécifiques aux antimicrobiens courants.
    • Identification des tendances de résistance aux antimicrobiens.
  • Inconvénients:
    • Nécessite un isolat bactérien.
    • Les tests in vitro peuvent différer légèrement des résultats in vivo.
    • Certains antimicrobiens spécifiques peuvent ne pas être inclus ou nécessiter des tests spéciaux distincts.
    • Coût modéré.

Immunohistochimie (IHC)

  • Détecte la présence d'antigène bactérien.
  • Type d'échantillon : tissus.
  • Avantages :
    • Détecte les bactéries sur le site de la lésion (bonne preuve de causalité).
    • Elle peut être utile dans les cas chroniques ou lorsque les animaux ont été traités avec des antibiotiques et que la culture bactérienne peut être difficile.
  • Inconvénients :
    • Le bon échantillon de tissu doit être envoyé.
    • Elle nécessite une quantité de bactéries significativement plus élevée que la PCR.
    • Elle n'évalue qu'une petite quantité de tissu.

Polymerase Chain Reaction (PCR)

  • Détecte la présence de séquences spécifiques d'acide nucléique (ADN) bactérien.
  • Types d'échantillons : tissus, sang, sérum, fluides buccaux, etc.
  • Avantages :
    • Très haute sensibilité (peut détecter de petites quantités de bactéries)
    • De nombreux types d'échantillons différents peuvent être utilisés.
    • Coût modéré.
  • Inconvénients :
    • Ne fait pas de distinction entre les bactéries vaccinales vivantes et les infections bactériennes de terrain.

Test immuno-enzymatique (ELISA)

  • Recherche la présence d'anticorps.
  • Type d'échantillon : sérum.
  • Avantages :
    • Les animaux restent positifs pendant plusieurs mois.
    • Le niveau d'anticorps dans de nombreux tests est bien corrélé avec la protection.
    • Il peut être utilisé dans les cas chroniques.
  • Inconvénients :
    • Les anticorps spécifiques et le moment de la détection peuvent varier légèrement entre les divers kits commerciaux disponibles.
    • De nombreux porcs sains peuvent être porteurs et donner un résultat sérologique positif.
    • Il ne fait pas la différence entre les anticorps maternels et ceux dus à l'exposition.
    • Il ne fait pas de distinction entre la vaccination et l'infection par des bactéries de terrain.

Interprétation des résultats

Pathologie macroscopique :

  • Positif : la pathologie macroscopique peut être utilisée pour un diagnostic de suspicion.
  • Négatif : Les cas chroniques ne se manifestent généralement pas par des lésions cutanées.

Culture bactérienne :

  • Positif : Confirme la maladie
  • Négatif : Négatif, ou peut nécessiter un enrichissement, en particulier dans les cas chroniques ou le test est effectué trop longtemps après l'infection.

Sensibilité aux antimicrobiens (antibiogramme) :

  • Sensible : Bon choix possible pour le traitement si l'antimicrobien peut atteindre le tissu cible.
  • Résistant : un antimicrobien différent doit être sélectionné.
  • CMI : si la CMI (concentration minimale inhibitrice) est effectuée, assurez-vous que l'antimicrobien sélectionné atteint la valeur de CMI indiquée dans l'organe cible.

IHC :

  • Positif : Des bactéries sont présentes sur le site de la lésion.
  • Négatif : Négatif ou infection trop ancienne pour détecter la bactérie ou l'animal préalablement traité avec des antibiotiques.

PCR :

  • Positif : La bactérie est présente/circule et confirme la maladie. Une vaccination récente avec un vaccin vivant modifié peut entraîner une PCR positive.
  • Négatif : Négatif ou infection trop ancienne pour détecter la bactérie ou l'animal préalablement traité avec des antibiotiques.

ELISA :

  • Positif : Anticorps maternels ou exposition antérieure (généralement > 7 à 10 jours) au vaccin ou au virus de terrain.
  • Négatif : Négatif ou infection trop récente pour être détectée (prend généralement 2 à 4 semaines après l'exposition)

Scénarios

  • Porcs présentant des lésions cutanées (typiquement > 20 kg) :
    • Confirmer que les lésions cutanées sont vraiment « en forme de losange » pour un diagnostic de suspicion.
    • Prélever la rate ou le foie d'un porc mort ou un échantillon de sang d'un porc vivant pour une culture bactérienne.
    • Si les porcs ont été traités avec des antibiotiques, demander une culture par enrichissement sélectif.
  • Arthrite chronique (typiquement > 20 kg) :
    • Recueillir le liquide articulaire du ou des porcs affectés :
      • PCR individuelles
      • Culture par enrichissement sélectif.
    • Recueillir aussi du ou des porc (s) mort (s) le tissu synovial et le cartilage affectés pour IHC rouget.
Figure 2. Prélèvement d'un échantillon articulaire avec un écouvillon chez un porc atteint de façon chronique.

Figure 2. Prélèvement d'un échantillon articulaire avec un écouvillon chez un porc atteint de façon chronique.

Consultez le ”guide des maladies” pour plus d’informations

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